دوره 13، شماره 1 - ( 3-1404 )
جلد 13 شماره 1 صفحات 45-33 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
M H S, M M, M A, H F, R R, D I et al . Comparison of the effects of hydro-alcoholic extracts of marigold, Aloe vera, and castor on the proliferation of L929 cells. jmsthums 2025; 13 (1) :33-45
URL: http://jms.thums.ac.ir/article-1-1318-fa.html
URL: http://jms.thums.ac.ir/article-1-1318-fa.html
حسینی صومعه گی ملیحه، مسعودی مھا، احمدیار محمد اسماعیل، فاضلی نژاد حسن، رھباریان راھله، ایل بیگی داود و همکاران.. مقایسه اثر عصاره هیدروالکلی گل همیشه بهار، آلوئه ورا و کرچک بر روند تکثیر سلول‌های L929. مجله دانشگاه علوم پزشکی تربت حیدریه. 1404; 13 (1) :33-45
ملیحه حسینی صومعه گی1 
، مھا مسعودی2 ، محمد اسماعیل احمدیار3 ، حسن فاضلی نژاد4 ، راھله رھباریان5 ، داود ایل بیگی6 ، محمد علی فھمیده کار 6
، مھا مسعودی2 ، محمد اسماعیل احمدیار3 ، حسن فاضلی نژاد4 ، راھله رھباریان5 ، داود ایل بیگی6 ، محمد علی فھمیده کار 6
1- گروه زیست‌شناسی، دانشگاه پیام نور، مشهد، ایران
2- معاونت آموزشی و پژوهشی، دانشگاه علوم پزشکی تربت حیدریه، تربت حیدریه، ایران
3- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی تربت‌حیدریه، تربت‌حیدریه، ایران
4- گروه زیست‌شناسی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران و هسته پژوهشی علوم شناختی و مطالعات سالمندی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
5- گروه زیست شناسی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
6- گروه بیوشیمی بالینی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تربت‌حیدریه، تربت‌حیدریه، ایران
2- معاونت آموزشی و پژوهشی، دانشگاه علوم پزشکی تربت حیدریه، تربت حیدریه، ایران
3- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی تربت‌حیدریه، تربت‌حیدریه، ایران
4- گروه زیست‌شناسی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران و هسته پژوهشی علوم شناختی و مطالعات سالمندی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
5- گروه زیست شناسی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
6- گروه بیوشیمی بالینی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تربت‌حیدریه، تربت‌حیدریه، ایران
چکیده: (198 مشاهده)
زمینه و هدف: پوست برای محافظت در برابر از دست دادن آب، خونریزی و مقابله با میکروارگانیسم‌ها حیاتی است. علت توجه و روآوری به استفاده از گیاهان دارویی در جهان عوارض جانبی کمتر، کاهش بار مالی، اثرات درمانی قابل‌توجه و توسعه صنایع وابسته به کشت گیاهان دارویی توسط سازمان بهداشت جهانی می‌باشد. این مطالعه با هدف مقایسه اثر عصاره‌های هیدروالکلی گیاه آلوئه‌ورا، کرچک و همیشه بهار بر تکثیر و رشد سلول‌های L929 انجام شد.
روش ها: سلول‌های L929 در محیط کشت RPMI 1640 کشت داده شد. سپس در غلظت‌های متفاوتی از عصاره‌های هیدروالکلی مختلف انکوبه شدند. ابتدا با روش MTT assay میزان IC50 برای هر عصاره محاسبه گردید. سپس در غلظت‌های بسیار پایین‌تر از IC50 عصاره‌ها میزان تکثیر سلولی با روش MTT assay و Wound healing assay مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: با استفاده از روش MTT assay در غلظت mg/ml 1 از عصاره‌ها، بیشترین اثر بر تکثیر سلول‌ها مشاهده گردید، به طوریکه میزان تکثیر و تعداد سلول‌های L929 48 ساعت بعد از تیمار با آلوئه‌ورا، کرچک و همیشه بهار به ترتیب 0/006 ± 0/61، 0/007 ± 0/57 و 0/006± 0/55 گزارش گردید که به طور معنی‌داری بیشتر از گروه کنترل (0/006 ± 0/45) بود (0/05>P). در بررسی اثر بر مهاجرت و بهبود زخم، میانگین اندازه عرض خراش، 48 ساعت بعد از تیمار با آلوئه‌ورا و کرچک به ترتیب 3/26 ± 50/54 و 4/12 ± 57/82 گزارش گردید که در مقایسه با گروه کنترل (2/73 ± 68/92) کاهش معنی‌داری داشت (0/05>P).
نتیجه گیری: ازآنجایی‌که تأثیر آلوئه‌ورا نسبت به دیگر عصاره‌های مورد مطالعه بر روی رشد سلول‌های L929 بیشتر و بهتر بود، استفاده از آلوئه‌ورا در ترکیبات دارویی، جهت ترمیم زخم، می‌تواند مفید باشد.
روش ها: سلول‌های L929 در محیط کشت RPMI 1640 کشت داده شد. سپس در غلظت‌های متفاوتی از عصاره‌های هیدروالکلی مختلف انکوبه شدند. ابتدا با روش MTT assay میزان IC50 برای هر عصاره محاسبه گردید. سپس در غلظت‌های بسیار پایین‌تر از IC50 عصاره‌ها میزان تکثیر سلولی با روش MTT assay و Wound healing assay مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: با استفاده از روش MTT assay در غلظت mg/ml 1 از عصاره‌ها، بیشترین اثر بر تکثیر سلول‌ها مشاهده گردید، به طوریکه میزان تکثیر و تعداد سلول‌های L929 48 ساعت بعد از تیمار با آلوئه‌ورا، کرچک و همیشه بهار به ترتیب 0/006 ± 0/61، 0/007 ± 0/57 و 0/006± 0/55 گزارش گردید که به طور معنی‌داری بیشتر از گروه کنترل (0/006 ± 0/45) بود (0/05>P). در بررسی اثر بر مهاجرت و بهبود زخم، میانگین اندازه عرض خراش، 48 ساعت بعد از تیمار با آلوئه‌ورا و کرچک به ترتیب 3/26 ± 50/54 و 4/12 ± 57/82 گزارش گردید که در مقایسه با گروه کنترل (2/73 ± 68/92) کاهش معنی‌داری داشت (0/05>P).
نتیجه گیری: ازآنجایی‌که تأثیر آلوئه‌ورا نسبت به دیگر عصاره‌های مورد مطالعه بر روی رشد سلول‌های L929 بیشتر و بهتر بود، استفاده از آلوئه‌ورا در ترکیبات دارویی، جهت ترمیم زخم، می‌تواند مفید باشد.
فهرست منابع
1. Bolla SR, Al-Subaie AM, Al-Jindan RY, Balakrishna JP, Ravi PK, Veeraraghavan VP, et al. (2019) In vitro wound healing potency of methanolic leaf extract of Aristolochia saccata is possibly mediated by its stimulatory effect on collagen-1 expression. Heliyon 5(5):e01648. [DOI:10.1016/j.heliyon.2019.e01648]
2. GHaderi R AM (2014) Recent advances in wound healing management. Journal scientific Birjand University of medical sciences. 21(1):1-19.
3. Bainbridge P (2013) Wound healing and the role of fibroblasts. Journal of wound care 22(8). [DOI:10.12968/jowc.2013.22.8.407]
4. Martin P (1997) Wound healing--aiming for perfect skin regeneration. Science 276(5309):75-81. [DOI:10.1126/science.276.5309.75]
5. George Broughton I, Janis JE, Attinger CE (2006) Wound healing: an overview. Plastic and reconstructive surgery 117(7S):1e-S-32e-S. [DOI:10.1097/01.prs.0000222562.60260.f9]
6. Evans RA, Tian YC, Steadman R, Phillips AO (2003) TGF-β1-mediated fibroblast-myofibroblast terminal differentiation-the role of smad proteins. Experimental cell research 282(2):90-100. [DOI:10.1016/S0014-4827(02)00015-0]
7. Helary C, Ovtracht L, Coulomb B, Godeau G, Giraud-Guille MM (2006) Dense fibrillar collagen matrices: a model to study myofibroblast behaviour during wound healing. Biomaterials 27(25):4443-52. [DOI:10.1016/j.biomaterials.2006.04.005]
8. Prendecka M, Mlak R, Jaszek M, Osinska-Jaroszuk M, Jakubiak-Hulicz M, Leibold C, et al. (2016) Effect of exopolysaccharide from Ganoderma applanatum on the electrical properties of mouse fibroblast cells line L929 culture using an electric cell-substrate impedance sensing (ECIS)-Preliminary study. Annals of Agricultural and Environmental Medicine 23(2). [DOI:10.5604/12321966.1203891]
9. Stojkovic R, Ivankovic S, Ivankovic D, Attias L, Mantovani A, Fucic A (2015) Testosterone-induced micronuclei and increased nuclear division rate in L929 cell line expressing the androgen receptor. Toxicology in Vitro 29(5):1021-5. [DOI:10.1016/j.tiv.2015.04.007]
10. Asghari B, aminian, Ruqiya (2017) Investiga the metabolic content of Different marigold extracts. the first international conference on new technologiesin science
11. Givol O, Kornhaber R, Visentin D, Cleary M, Haik J, Harats M (2019) A systematic review of Calendula officinalis extract for wound healing. Wound Repair and Regeneration 27(5):548-61. [DOI:10.1111/wrr.12737]
12. Nitbani FO, Tjitda PJP, Wogo HE, Detha AIR (2022) Preparation of Ricinoleic Acid from Castor Oil: A Review. Journal of Oleo Science 71(6):781-93. [DOI:10.5650/jos.ess21226]
13. Hosseini k, Khalil (2010) Investiga ting the chemical and medicinal compounds in the yellow patience plant Aloe vera.
14. Joseph B, Raj SJ (2010) Pharmacognostic and phytochemical properties of Aloe vera linn an overview. Int J Pharm Sci Rev Res 4(2):106-10.
15. Najafi N, Arabi M, Jafarzadeh H (2014) Inducing effect of aloe vera gel extract on epithelial growth factor receptor gene expression in cutaneous wounds of male mice Balb/c.
16. Spector DL, Goldman RD, Leinwand LA. Cells: a laboratory manual: Cold Spring Harbor Laboratory Press; 1998.
17. Zare M, Ebrahimi Vosta Kalaee S, Aezi H (2020) Analysis the Cytotoxicity Effects of Hydroalcoholic Extract of Danae Racemosa Plant on Mouse Breast Cancer Cells (4T1) by MTT. Knowledge and Health 15(1):49-57.
18. Najafi N, Arabi M, Jafarzadeh H (2014) The healing power of Aloe vera mucilage: induction of insulin-like growth factor gene expression and regeneration tissue in mouse damaged skin. Journal of Shahrekord University of Medical Sciences 16(2).
19. Alahtavakoli M, Vazirinejad R, Ansari Jaberi A, Negahban T, Mashayekhi H, Nazari M, et al. (2012) Effect of Teucrium polium extract on skin wound healing in rat. Hormozgan Medical Journal 16(1):17-24.
20. Manoj K, Mishra D, Maity TK, Gupta SD (2009) Screening wound-healing potential of different Aloe vera L. germplasms at the cellular level. Med Aromat Plant Sci Biotechnol 3(1):62-4.
21. malekhosseini A, Ghaffarzadegan R, Alizadeh SA, GR, Reza, Haji Agaei R, Ahmadlou M (2013) Effect of aloe vera gel, compared to 1% silver sulfadiazine cream on second-degree burn wound healing. Complementary Medicine Journal 3(1):418-28.
22. Choi S, Chung M-H (2003) A review on the relationship between aloe vera components and their biologic effects. Seminars in Integrative Medicine 1(1):53-62. [DOI:10.1016/S1543-1150(03)00005-X]
23. Nada AA, Hassabo AG, Fayad W, Awad HM, Sleem AA, Shaffie NM, et al. (2015) Biomaterials based on essential fatty acids and carbohydrates for chronic wounds. Journal of Applied Pharmaceutical Science 5(3):013-21. [DOI:10.7324/JAPS.2015.510.S3]
24. Davari S, Hajinezhad M, Samadi K, Eftekhari S (2018) The effect of calendula, aloe and caster on cutaneous wounds healing process in mature male rat. Journal of Rafsanjan University of Medical Sciences 17(2):93-104.
25. Lawrence R, Tripathi P, Jeyakumar E (2009) Isolation, purification and evaluation of antibacterial agents from Aloe vera. Brazilian Journal of Microbiology 40:906-15. [DOI:10.1590/S1517-83822009000400023]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 | این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Designed & Developed by : Yektaweb